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Apr 17, 2024

Mapas transcriptômicos espaçotemporais de embriões inteiros de camundongos no início da organogênese

Nature Genetics volume 55, páginas 1176–1185 (2023)Cite este artigo

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A orquestração espaço-temporal da expressão genética é necessária para o desenvolvimento embrionário adequado. O uso de tecnologias unicelulares começou a fornecer uma resolução melhorada da dinâmica regulatória inicial, incluindo definições moleculares detalhadas da maioria dos estados celulares durante a embriogênese do camundongo. Aqui usamos Slide-seq para construir mapas transcriptômicos espaciais de embriões de dia embrionário completo (E) 8.5 e E9.0 e E9.5 parciais. Para apoiar a sua utilidade, desenvolvemos o sc3D, uma ferramenta para reconstruir e explorar 'embriões virtuais' tridimensionais, que permite a investigação quantitativa de padrões regionalizados de expressão genética. Nossas medições ao longo dos principais eixos embrionários do tubo neural em desenvolvimento revelaram vários genes anteriormente não anotados com padrões espaciais distintos. Também caracterizamos a identidade transcricional conflitante de tubos neurais 'ectópicos' que emergem em embriões mutantes Tbx6. Em conjunto, apresentamos uma estrutura experimental e computacional para a investigação espaço-temporal de estruturas embrionárias inteiras e fenótipos mutantes.

O desenvolvimento embrionário necessita do tempo e localização precisos de numerosos processos moleculares, celulares e teciduais1,2,3,4,5. Esses eventos são direcionados através do controle espaço-temporal da expressão gênica que orquestra a especificação, migração e localização do tipo celular . Qualquer perturbação desta regulação resulta frequentemente em letalidade embrionária ou defeitos de desenvolvimento5,10,11. No final da gastrulação e início da organogênese (dias embrionários (E) 8,5–9,5), os tecidos sofrem grandes alterações morfológicas, como loop cardíaco, compartimentação cerebral e dobramento do tubo neural, para garantir estrutura e função adequadas . Através da neurulação, as células epiteliais na placa neural dobram-se para formar um tubo morfologicamente definido, que exibe uma assinatura de expressão gênica estratificada ao longo de seu eixo dorsoventral (DV), que é necessária para a subsequente diversificação do subtipo neuronal15,16,17,18,19,20 ,21. Muitos genes envolvidos neste processo foram identificados, mas as redes reguladoras genéticas precisas que governam estes padrões permanecem sob investigação. Estudos unicelulares recentes começaram a fornecer uma compreensão mais profunda da especificação da topografia do destino e destacaram alguns mecanismos moleculares subjacentes a essas transições de estado celular . Uma limitação das abordagens baseadas na dissociação é a sua incapacidade de preservar a estrutura do tecido, o que impede a análise de expressão no contexto nativo. Avanços recentes nas tecnologias transcriptômicas espaciais começaram a preencher essa lacuna, visando explorar a organização dos tipos celulares nos tecidos adultos e em embriões em desenvolvimento .

Neste estudo, utilizamos Slide-seq, uma tecnologia que gera dados de expressão gênica em todo o transcriptoma com resolução espacial de 10 µm, para construir mapas de embriões inteiros durante a organogênese inicial do camundongo. Nossos dados permitiram a exploração de padrões espaciais de expressão gênica, distribuições de estado celular, a reconstrução de mapas transcriptômicos tridimensionais (3D) para análise de expressão gênica 'virtual' e dissecção de fenótipo mutante. Aproveitamos especificamente os dados para identificar trajetórias regionalizadas de expressão e diferenciação gênica no espaço, com foco na formação e padronização do tubo neural. No geral, fornecemos um atlas espacial abrangente e de alta resolução, juntamente com um visualizador acessível e pronto para uso para explorar padrões de expressão gênica no embrião de camundongo em desenvolvimento.

Para mapear espacialmente as identidades celulares durante a organogênese inicial, usamos Slide-seq em dois embriões E8.5 representativos, um E9.0 e três E9.5 parciais (Fig. 1a e Dados Estendidos Fig. 1a). Para os dois embriões E8.5, obtivemos 15 e 17 cortes sagitais (espessura de 10 µm), respectivamente, com intervalos de aproximadamente 30 µm entre eles. Para o embrião E9.0, foram obtidas 26 seções sagitais com intervalos de 20 µm, e para os três embriões E9.5, foram obtidas 13 fatias da linha média (Fig. 1a e Tabela Suplementar 1). No total, recuperamos 533.116 esferas de alta qualidade com um valor médio de 1.798 transcritos e 1.224 genes por esfera (Extended Data Fig. 1b-d). Para verificar os estados das células atribuídos a cada conta, mapeamos computacionalmente as contas para uma referência de célula única gerada anteriormente (Extended Data Fig. 1e, f) . Com essas informações, extraímos de cada esfera sequenciada (1) coordenadas espaciais, (2) perfil de expressão gênica associada e (3) atribuição de estado celular. No geral, observamos bom alinhamento dos estados celulares e restrição espacial de genes marcadores, como Ttn (coração), T (botão da cauda), Meox1 (somitos) e Sox2 (tubo neural, cérebro), entre outros (Extended Data Fig. 2a –e). Além disso, observamos alta reprodutibilidade na recuperação de uma composição embrionária comparável e padrões de expressão gênica entre réplicas (Extended Data Fig. 2c-f).

 5 embryos per experiment, and consistently yielded the same phenotype. The Slide-seq experiment was performed on one representative transversal section for WT and two for KO embryos. b, Spatial grid map showing the organization of neural tube 1, 2 and somitic cells in WT and Tbx6 KO embryos. c, UMAP showing the projection of cells assigned to the indicated clusters on the trunk trajectory (Fig. 3c), with the size of the dots representing the degree of uncertainty of mapping to the respective position. d, Dot plot showing the expression of the indicated genes in the three clusters (dot size is percentage of cells per cluster; color is cluster average normalized expression). e, RNA–FISH of the indicated genes in a transversal section of an E9.5 WT and KO embryos. The dotted lines in the schematic denote the AP position within the trunk from which sections were obtained. A representative section from WT and KO embryos at E9.5 is shown. The expression pattern was verified in two of the KO experiments with n > 3 embryos per experiment. Scale bars, 50 µm. f, Schematic showing the transcriptional identity and patterning characteristic of the ectopic neural tubes that arise in the absence of Tbx6 expression, highlighting their conflicting transcriptional identity./p>0.2; Two-sided Wilcoxon ran sum test). e. Schematic and spatial expression plot distinguishing dorsal and ventral diencephalon/midbrain regions. Shh marks the ventral domain, whereas Fzd10 (Wnt receptor) marks the dorsal part. Each dot represents a bead. The color scale depicts normalized gene expression. Scale bar, 100 µm. D, dorsal; V, ventral; R, rostral; C, caudal./p>0.05 then ranked by FDR). A selected set of previously known genes associated with dorsoventral patterning (black) are highlighted on the right. Specific structures along the axis are highlighted at the bottom of the heatmap. Genes are row z-score normalized and listed in Supplementary Table 7. b. Heatmap showing column scaled z-score of Pearson correlation coefficients comparing the Slide-seq dorsoventral bins and the identified clusters from a neural tube single-cell reference26. RP, roof plate; dp, dorsal progenitors; pMN, motor neuron progenitors; FP, floor plate. c. Heatmap showing an extended subset of the genes that display gene expression regionalization in one of the eight generated bins along the dorsoventral axis (genes filtered by FDR < 0.01 and logFC>0.05 then ranked by FDR). Specific structures along the axis are highlighted at the bottom of the heatmap. Genes are row z-score normalized and listed in Supplementary Table 7. d. Pie chart displaying differentially expressed genes along the dorsoventral axis divided by cellular and molecular function. Genes are listed in Supplementary Table 7. e. Schematic (top panel) and spatial gene expression plots of the known neural tube patterning genes in array E9.5_2. Each dot denotes a bead. The color scale depicts normalized gene expression. D, dorsal; V, ventral; A, anterior; P, posterior. f. RNA-FISH and Slide-seq quantifications for each profiled gene from Fig. 4e. Genes are bin z-score normalized (magenta: RNA-FISH; orange: Slide-seq). D, dorsal; V, ventral./p>

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